Онлайн доклады

Онлайн доклады

Сателлитные симпозиумы в рамках научной конференции «Невские горизонты - 2022»

Сателлитные симпозиумы в рамках научной конференции «Невские горизонты - 2022»

ОКТ: новые горизонты

Сателлитный симпозиум

ОКТ: новые горизонты

Превентивная интрасклеральная фланцевая фиксация ИОЛ при подвывихе хрусталика

Вебинар

Превентивная интрасклеральная фланцевая фиксация ИОЛ при подвывихе хрусталика

Лечение глаукомы: инновационный вектор - 2022. III Всероссийская научно-практическая конференция с международным участием

Конференция

Лечение глаукомы: инновационный вектор - 2022. III Всероссийская научно-практическая конференция с международным участием

Вебинар компании «Rayner»

Вебинар компании «Rayner»

Цикл онлайн дискуссий компании «Акрихин» «О глаукоме и ВМД в прямом эфире»

Цикл онлайн дискуссий компании «Акрихин» «О глаукоме и ВМД в прямом эфире»

Алгоритм ведения пациентов с астенопией после кераторефракционных операций

Вебинар

Алгоритм ведения пациентов с астенопией после кераторефракционных операций

Cовременные технологии диагностики патологий заднего отдела глаза

Сателлитный симпозиум

Cовременные технологии диагностики патологий заднего отдела глаза

Вебинары компании  «Акрихин»

Вебинары компании «Акрихин»

Снижение концентрации «Бримонидина», как новое решение в терапии у пациентов с глаукомой

Вебинар

Снижение концентрации «Бримонидина», как новое решение в терапии у пациентов с глаукомой

Лазерная интраокулярная и рефракционная хирургия Всероссийская научно-практическая конференция с международным участием

Конференция

Лазерная интраокулярная и рефракционная хирургия Всероссийская научно-практическая конференция с международным участием

Актуальные вопросы офтальмологии: в фокусе – роговица

Вебинар

Актуальные вопросы офтальмологии: в фокусе – роговица

XIX Конгресс Российского глаукомного общества  «19+ Друзей Президента»

XIX Конгресс Российского глаукомного общества «19+ Друзей Президента»

Пироговский офтальмологический форум

Пироговский офтальмологический форум

Кератиты, язвы роговицы

Вебинар

Кератиты, язвы роговицы

Актуальные вопросы офтальмологии

Вебинар

Актуальные вопросы офтальмологии

Всероссийский консилиум. Периоперационное ведение пациентов с глаукомой

Сателлитный симпозиум

Всероссийский консилиум. Периоперационное ведение пациентов с глаукомой

Трансплантация роговично-протезного комплекса у пациента с васкуляризированным бельмом роговицы

Трансплантация роговично-протезного комплекса у пациента с васкуляризированным бельмом роговицы

Новые технологии в офтальмологии. Посвящена 100-летию образования Татарской АССР

Конференция

Новые технологии в офтальмологии. Посвящена 100-летию образования Татарской АССР

Особенности нарушения рефракции в детском возрасте Межрегиональная научно-практическая конференция

Конференция

Особенности нарушения рефракции в детском возрасте Межрегиональная научно-практическая конференция

Онлайн доклады

Онлайн доклады

Сателлитные симпозиумы в рамках научной конференции «Невские горизонты - 2022»

Сателлитные симпозиумы в рамках научной конференции «Невские горизонты - 2022»

ОКТ: новые горизонты

Сателлитный симпозиум

ОКТ: новые горизонты

Превентивная интрасклеральная фланцевая фиксация ИОЛ при подвывихе хрусталика

Вебинар

Превентивная интрасклеральная фланцевая фиксация ИОЛ при подвывихе хрусталика

Лечение глаукомы: инновационный вектор - 2022. III Всероссийская научно-практическая конференция с международным участием

Конференция

Лечение глаукомы: инновационный вектор - 2022. III Всероссийская научно-практическая конференция с международным участием

Вебинар компании «Rayner»

Вебинар компании «Rayner»

Цикл онлайн дискуссий компании «Акрихин» «О глаукоме и ВМД в прямом эфире»

Цикл онлайн дискуссий компании «Акрихин» «О глаукоме и ВМД в прямом эфире»

Алгоритм ведения пациентов с астенопией после кераторефракционных операций

Вебинар

Алгоритм ведения пациентов с астенопией после кераторефракционных операций

Cовременные технологии диагностики патологий заднего отдела глаза

Сателлитный симпозиум

Cовременные технологии диагностики патологий заднего отдела глаза

Вебинары компании  «Акрихин»

Вебинары компании «Акрихин»

Снижение концентрации «Бримонидина», как новое решение в терапии у пациентов с глаукомой

Вебинар

Снижение концентрации «Бримонидина», как новое решение в терапии у пациентов с глаукомой

Лазерная интраокулярная и рефракционная хирургия Всероссийская научно-практическая конференция с международным участием

Конференция

Лазерная интраокулярная и рефракционная хирургия Всероссийская научно-практическая конференция с международным участием

Актуальные вопросы офтальмологии: в фокусе – роговица

Вебинар

Актуальные вопросы офтальмологии: в фокусе – роговица

XIX Конгресс Российского глаукомного общества  «19+ Друзей Президента»

XIX Конгресс Российского глаукомного общества «19+ Друзей Президента»

Все видео...

1.4 Экспериментальные модели в изучении жировой ткани и моделировании ее трансплантации


    Вопреки широкому распространению животных моделей в экспериментальной медицине, при трансляции результатов, полученных в ходе аутотрансплантации ПЖТ кроликов, в том числе в глазницу, на человека следует учитывать анатомические и физиологические особенности этих наиболее доступных лабораторных животных. Ограниченность моделирования процессов человеческого организма на кроликах обусловлена тем, что у этих животных репаративные процессы протекают иначе, жировая ткань более фиброзирована, глазница имеет выраженную шаровидную форму, практически нет собственного ЖТГ, а ретробульбарное пространство очень ограничено [59, 82].

    У кроликов переднюю треть глазницы занимает глазное яблоко, положение которого характеризуется естественным проптозом [59, 82]. При этом ретробульбарное пространство невелико и практически не содержит жировой клетчатки [13], за исключением отдельных элементов жировой ткани в составе мышц и желез глазницы [59, 82]. Поэтому достаточно войти в глазницу на несколько миллиметров и сделать инъекцию, чтобы вызвать дополнительное смещение глазного яблока вперед [59]. В свою очередь, при проведении инъекции легко повредить железу Гардера, расположенную близко к глазному яблоку в передне-нижней части глазницы [82], что может вызвать ответную воспалительную реакцию на введение трансплантата [59]. Авторы, в эксперименте на кроликах моделировавшие введение жировой ткани в глазницу, отмечали, что у животных глазное яблоко смещалось кпереди с формированием послеоперационного проптоза, регистрируемого путем фотографирования и дальнейшего анализа цифровых изображений. При этом они отмечали необходимость дальнейших исследований на модели энофтальма [59]. С учетом того, что у кроликов практически нет ЖТГ, помещение жирового трансплантата само по себе нарушает нормальные топографо -анатомические отношения внутри глазницы и не является физиологичным. Таким образом, влияние механического фактора (движение глазного яблока и глазодвигательных мышц в глазнице) не идентично наблюдаемому в нормальной глазнице человека и при энофтальме, в частности.

    Строение ПЖТ у кролика и человека тоже отличается. У кроликов распространенность ПЖТ варьирует от сплошного слоя до отдельных скоплений в паху и в области лопаток, в зависимости от возраста и характера питания животных [3]. ПЖТ паховой области у кроликов окружена фиброзной капсулой, что делает проведение липосакции в этой области затруднительным, в связи с чем в экспериментах используется резецированная жировая ткань, вручную отделенная от фиброзной капсулы и измельченная [59].

    С учетом указанных анатомо-физиологических особенностей доступных лабораторных животных и в соответствии с современными стремлениями отказаться от экспериментов на животных в пользу математического моделирования и моделей in vitro [114], в качестве альтернативы для моделирования поведения МСК ЖТГ, введенных в трансплантат ПЖТ человека, может служить органотипическая культура жировой ткани [184, 192, 197]. При органотипическом культивировании реализуется возможность изучения процесса в контролируемых, управляемых, точно учитываемых условиях, что соответствует определению научного эксперимента [5].

    Наиболее технически простой методикой органотипического культивирования является помещение фрагмента ткани или органа в соответствующую питательную среду. Таким образом орган отипическое культивирование жировой ткани яичек крыс в течение шести дней проводили J. Frohlich с коллегами (1972). По окончании наблюдения эти авторы не выявили гистологических признаков некроза кле ток [92]. В более позднем протоколе для органотипического культивирования также предлагалось помещать фрагменты жировой ткани в жидкую питательную среду без какого-либо носителя, что позволяло поддерживать жировую ткань в течение семи дней [80].

    Тем не менее, значительным недостатком органотипического культивирования является отсутствие во фрагментах действующей сосудистой системы, что частично компенсируется за счет диффузии питательных веществ и метаболитов преимущественно на его периферии [40]. Для улучшения газового обмена и поступления питательных веществ фрагмент органа традиционно помещают на границу раздела газовой и жидкостной фаз. Подобный принцип использовался при органотипическом культивировании фрагментов бурой жировой ткани крыс R.L. Sidman (1956) [181]. Автор применял модифицированную методику, предложенную J.M. Chen в 1954 году, для изучения органогенеза бурой жировой ткани крыс с 15-го дня гестации до девяти дней жизни. Согласно опубликованным результатам этого исследования, жизнеспособность клеток жировой ткани сохранялась в среднем в течение семи дней культивирования и зависела от возраста животного-донора, температуры культивирования и состава питательной среды [181]. В своем исследовании вирусной трансдукции S. Kallendrusch (2016) с коллегами использовали органотипическую культуру жировой ткани груди в виде срезов толщиной 0,5 мм, помещенных на вкладышах для культивирования тканей. Период наблюдения в целях исследования составил 96 часов после помещения фрагмента жировой ткани в условия кул ьтивирования [116]. В качестве альтернативы для улучшения аэрации и поступления питательных веществ могут использоваться динамические условия с вращением культуры [ 40, 207].

    Известно, что закрепление фрагмента ткани или органа на твердом субстрате может привести к экспансии клеток на периферии [40]. С одной стороны, это приводит к соответствующему изменению геометрии образца, в связи с этим для устранения выхода клеток предложено использовать не смачиваемые поверхности [40]. С другой стороны, спонтанный выход клеток из фрагмента может быть использован в качестве метода выделения клеток из ткани [97, 188, 207]. Однако, в связи с тем, что площадь контакта фрагмента с плоской поверхностью ограничена, а значит ограничена и возможность миграции и пролиферации клеток, предлагалось трехмерное органотипическое культивирование фрагментов жировой ткани в субстратах, напоминающих естественный внеклеточный матрикс [ 207]. С этой целью для культивирования жировой ткани применялся матрикс на основе фибрина (высоко гидратированная трехмерная фибриллярная полимерная сеть) [207], а также гель на основе коллагена [184, 192, 197]. Если в работе Y.I. Yang с коллегами (2010) органотипическое культивирование с целью получения культуры клеток продолжалось семь дней [207], то по данным E. Sonoda (2008), S. Toda (2009) и K. Uchihashi (2010) культивирование жировой ткани в коллагеновом геле возможно в течение не менее трех недель [184, 192, 197]. В качестве альтернативы коллагеновому гелю может выступать гиалуроновая кислота, являющаяся естественным компонентом экстрацеллюлярного матрикса животных тканей [139].

    Как было показано ранее [100, 143], гиалуроновая кислота поддерживает пролиферацию, дифференцировку и секрецию клеток-предшественников жировой ткани.

    Планируя модель физиологического процесса необходимо выделять ключевые элементы, которые должны быть воспроизведены в модели для приближения ее к естественному процессу. Исследования судьбы жирового аутотрансплантата в клинических исследования х на людях позволили установить гистологические изменения, отражающие процессы некроза и ремоделирования транплантата. Многочисленными научными группами показано, что трансплантируемый фрагмент жировой ткани должен быть минимальных размеров (не более 3,0 мм в диаметре) и равномерно распределен в реципиентной области для оптимальной васкуляризации [64, 65, 78]. В связи с этим предпочтение отдается мелко фрагментированной жировой ткани, получаемой в ходе липоаспирации.

    Современные тенденции минимизировать хирургическую травму, особенно в области глазницы, служат дополнительным обоснованием использования именно этой методики получения жирового аутотрансплантата. Кроме того, описанные в литературе методики органотипического культивирования жировой ткани, также в качестве одного из этапов подразумевают измельчение фрагмента до частиц размером от 0,5 до 3,0 мм [80, 192, 197, 207].

    Таким образом, ограниченность животной модели, обусловленная вышеуказанными анатомо-физиологическими особенностями глазницы и ПЖТ наиболее доступных лабораторных животных, а также материальные и экономические затраты, связанные с экспериментами на животных, при возможности выполнения поставленных задач с использованием альтернативных культуральных моделей, – все это обусловливает преимущественный выбор органотипической культуры жировой ткани в качестве модели для изучения взаимодействия МСК ЖТГ и изолированных фрагментов ПЖТ.

    Таким образом, энофтальм является тяжелой и трудно поддающейся коррекции офтальмопатологией. Так как в исходе действия разнообразных этиологических факторов наблюдается уменьшение объема ЖТГ, липофиллинг глазницы представляется наиболее предпочтительным методом коррекции на этапе восстановления объема мягких тканей. Современные клинические и экспериментальные разработки с использованием МСК, в частности выделенными из ЖТГ, показали наличие у этих клеток разнообразных терапевтических эффектов. В этой связи дальнейшие экспериментально-клинические исследования были направлены на разработку способа получения МСК ЖТГ, применимого в клинической практике, и установление наличия у этих клеток свойств, потенциально способных повышать жизнеспособность жирового трансплантата.


Страница источника: 37-41

OAI-PMH ID: oai:eyepress.ru:article27470
Просмотров: 1092




Johnson & Johnson
Alcon
Bausch + Lomb
Reper
NorthStar
ЭТП
Rayner
Senju
Гельтек
santen
Акрихин
Ziemer
Eyetec
МАМО
Tradomed
Nanoptika
R-optics
Фокус
sentiss
nidek