3.1. Методы забора интраокулярного материала

    Для проведения бактериологического, микологического исследования и ПЦР-диагностики необходимо получить содержимое из передней камеры и из полости стекловидного тела. Как правило, с забором интраокулярного содержимого из передней камеры проблем не возникает, т.к. существует множество разновидностей инсулиновых шприцов с тонкими иглами 30G, которые позволяют произвести прокол роговицы с последующим забором жидкости из передней камеры без дополнительной травматизации глаза.

    Наиболее часто возникают проблемы с забором достаточного количества содержимого из витреальной полости. В современной литературе имеются скудные данные о методике проведения забора материала: предлагается проводить пункционную биопсию. Короткаяигла 25G вводится через плоскую часть цилиарного тела, и биоптат стекловидного тела осторожно аспирируется. При проведении биопсии стекловидного тела (на витреальном глазу) можно получить 0,1-0,3 мл биоптата для анализа. По нашему мнению, данное количество материала недостаточно для адекватной диагностики. Методика устарела, она достаточно травматична и опасна для пациента, т.к. аспирация экссудата приводит к усилению тракций сетчатки и дополнительным осложнениям.

    Современная методика забора интраокулярного материала описана в практическом руководстве ESCRS по профилактике и лечению эндофтальмита (Barry P., 2013). Данный способ наиболее безопасен и малотравматичен. Забор материала проводится витреотомом 25 G, аспирационный поток у которого подсоединен к шприцу и обеспечивается за счет активного оттягивания поршня шприца ассистентом.

    Следующим этапом исследования является сохранение материала и его транспортировка в бактериологическую лабораторию. Офтальмохирург не всегда имеет четкое представление о том, как правильно проводить бактериологическое исследование и транспортировать материал. В современной офтальмологической литературе отсутствуют четкие рекомендации по данной проблеме.

    Транспортировка материала занимает определенное время, необходимое для назначения этиологического антибактериального лечения. В это время пациент получает эмпирическое лечение, хотя современные офтальмологические клиники, как правило, оснащены лабораторным оборудованием, в частности термостатом, который позволяет провести посев на среды непосредственно в конце операции, с культивированием в термостате в течение 24 часов. Далее возможна транспортировка в термосумке среды с первично выращенной культурой в бактериологическую лабораторию для бактериологического анализа и на чувствительность к антибиотикам.

    Основываясь на рекомендациях ESCRS и собственном опыте по забору материала, мы разработали алгоритм действия хирурга перед витрэктомией для получения достаточного количества интраокулярного содержимого, а также для его дальнейшего сохранения, транспортировки и бактериологического исследования.