Рисунок 13 – Первичная культура клеток, выделенных из ретробульбарной части кадаверного ЖТГ. Витальная фазово-контрастная микроскопия, ув. 200
Рисунок 14 – Первичная культура клеток, выделенных из интраоперационно резецированного ЖТГ. Витальная фазово-контрастная микроскопия, ув.100
3.3.1 Разработанная методика выделения МСК жирового тела глазницы и характеристика полученных клеток
С использованием стандартной методики выделения МСК из жировой ткани первичную культуру жизнеспособных фибробластоподобных колониеобразующих клеток, адгезивных к культуральному пластику, из ЖТГ удалось выделить только в одном случае из 11 образцов кадаверного ЖТГ (рисунок 13).
Стрелками указаны фибробластоподобные колониеобразующие клетки
Такой результат свидетельствовал о низкой жизнеспособности МСК и не позволил использовать фрагменты кадаверного ЖТГ в качестве стабильного источника для экспериментально-клинических исследований, что определило необходимость использования интраоперационно резецированных фрагментов ЖТГ для выделения МСК.
Рисунок 15 – Первичная культура МСК ЖТГ. Витальная фазово-контрастная микроскопия, ув.100 а – первичная культура МСК ЖТГ (стрелкой указана отдельная клетка); б – адипоцит (выделен) в толще культуральной жидкости
Рисунок 16 – Экспрессия поверхностных маркеров клетками, выделенными из ЖТГ по модифицированной методике
В то же время из двух образцов интраоперационно резецированного ЖТГ, хранившихся при тех же температурных условиях, но более длительно (24 часа), необходимую клеточную культуру выделить не удалось (таблица 4).
Модифицированная методика выделения МСК (см. раздел 2.5.1.3) позволила получать из 0,2 мл ЖТГ от 0,4х106 до 1,0х106клеток через 7–10 дней культивирования, в отличие от стандартной методики, обеспечивавшей получение не более 0,4х105 клеток за аналогичный период времени. Получение дополнительного количества фибробластоподобных колониеобразующих клеток происходило за счет активной миграции этих клеток из фрагментов тканевого дебриса (рисунок 14), помещенных в культуральный флакон наряду с осадком стромально-клеточной фракции. Клетки, выделенные с использованием модифицированной методики, характеризовались специфичной фибробластоподобной формой (рисунок 14, 15 а), адгезией к культуральному пластику и спонтанной дифференцировкой в адипоциты (рисунок 15 б, в).
Стрелкой указан фрагмент тканевого дебриса, на его периферии фибробластоподобные клетки
Иммунофенотипирование методом проточной цитофлуориметрии показало, что полученная культура клеток была представлена клетками CD9 + /CD10 + /CD13 + /CD19 -/CD29 + /CD34 ± /CD44 + /CD73 + /CD90 ± /CD105 + /CD117 -/ CD166 + (рисунок 16). Совокупность культуральных и иммунофенотипических характеристик позволила идентифицировать получаемые с помощью модифицированной методики клетки как МСК.
Таким образом, проведенный сравнительный анализ условий выделения и жизнеспособности МСК показал, что интраоперационно резецированные фрагменты ЖТГ при хранении в условиях гипотермии не более пяти часов являются предпочтительным источником для выделения МСК, по сравнению с образцами кадаверного ЖТГ. Использование модифицированной методики выделения клеток позволяет даже из малого (0,2 мл) объема ЖТГ получать до 1,0х106 клеток через 7–10 дней культивирования. При этом выделяемая культура клеток соответствовала основным критериям отнесения к МСК и использовалась в дальнейших экспериментах in vitro.
3.3.2 Секреторная активность МСК жирового тела глазницы
Таблица 4 – Результаты выделения клеток из фрагментов кадаверного и интраоперационно резецированного ЖТГ
Таблица 5 – Концентрации VEGF A и TGF-β 2 в кондиционированной питательной среде от МСК из ЖТГ
Количественные значения концентраций цитокинов, представленные в таблице 5, свидетельствуют о том, что для TGF-β 2 в тех же клеточных культурах были характерны более низкие концентрации. При этом в большинстве образцов (не включены в таблицу) они оказались ниже порога чувствительности тест-системы. Обратило на себя внимание, что в двух образцах питательной среды от МСК, выделенных из верхней медиальной фракции ЖТГ («белый» жир), отмечалась более активная секреция TGF-β 2, зафиксированная уже на 2-е сутки культивирования.
Таким образом, на этапе изучения секреторной активности МСК, выделенных из ЖТГ, показано, что в кондиционированной питательной среде, полученной при культивировании этих клеток на протяжении пяти суток, определяются VEGF A и TGF-β 2. Данный факт позволяет предположить, что при сокультивировании с фрагментами ПЖТ в модели сотрансплантации in vitro МСК будут оказывать положительное влияние на поддержание жизнеспособности клеток ПЖТ.