
Рисунок 19 – Динамика образования клеточного слоя после адгезии 3D сфероидов РПЭ (нормотермическое культивирование) а – 1-е сутки; б – 3-и сутки; в – 7-е сутки

Рисунок 20 – 3D сфероиды РПЭ. Выраженная экспрессия маркера RPE-65 а – 4-е сутки культивирования; б – 11-е сутки культивирования
Сфероиды, полученные из клеток РПЭ Р1 в 1-й опытной группе, переносили из агарозных планшетов на культуральные матрасы и заливали 5 мл питательной среды стандартного состава. Для исследования использовали сфероиды на 4-е, 7-е и 11-е сутки культивирования.
Во всех опытных группах уже спустя 3 часа с помощью метода перкуссии отмечали адгезию большинства сфероидов (65%). На 1-е сутки сфероиды прикреплялись к поверхности дна лунок культуральных планшетов и в течение последующих дней «распластывались», образуя вокруг изначальной зоны прикрепления слой клеток пигментного эпителия.

Рисунок 21 – Экспрессия маркера ZO-1 а – 4-е сутки культивирования; б – 11-е сутки культивирования

Рисунок 22 – Выраженная экспрессия цитокератина 8,18 (AlexaFluor 488) и слабая экспрессия виментина (AlexaFluor 594) а – 4-е сутки культивирования; б – 11-е сутки культивирования
Таким образом, на четвертом этапе работы были определены качественные и количественные характеристики спрединга клеточных слоев вокруг адгезированных сфероидов. Средняя площадь слоя клеток, образуемого вокруг сфероидов, статистически достоверно увеличивалась в течение 1-й недели (р<0,05) и статистически достоверно не изменялась в течение последующих сроков 2D культивирования (р>0,05).
При иммуноцитохимическом окрашивании было выявлено, что 3D сфероиды РПЭ (4-х, 7-и и 11-и суток культивирования) активно экспрессируют маркеры RPE-65 (высокоспецифичный маркер пигментного эпителия сетчатки), ZO-1 (белок запирающих межклеточных контактов) и цитокератин 8, 18 (белки промежуточных филаментов цитоскелета эпителиальных клеток), и практически не экспрессируют мезенхимальный маркер виментин.




















