Репозиторий OAI—PMH
Репозиторий Российская Офтальмология Онлайн по протоколу OAI-PMH
Конференции
Офтальмологические конференции и симпозиумы
Видео
Видео докладов
Источник
Современные аспекты диагностики и лечения первичной эндотелиальной дистрофии роговицы (Фукса)Глава 4. Результаты молекулярно-генетических исследований пациентов с первичной эндотелиальной дистрофией роговицы Фукса
4.1. Методы молекулярно-генетических исследований
Всего было исследовано 78 образцов замороженной цельной крови с антикоагулянтом в объеме 4-6 мл. Из которых 11 мужчин и 67 женщин. Образцы были обезличены.
4.1.1. Выделение ДНК из образцов крови
ДНК была выделена из размороженных образцов крови (400 мкл) с помощью набора Wizard® Genomic DNA Purification Kit (Promega Corp., США) согласно протоколу производителя.
4.1.2. Полимеразная цепная реакция (ПЦР)
Праймеры к интересующим участкам ДНК были подобраны и проверены на специфичность с помощью программ «Premier Primer» («Premier Biosoft», США) и Primer-BLAST («NCBI», США). Последовательности праймеров приведены в табл. 4. Олигонуклеотиды для проведения ПЦР были синтезированы в НПФ «Литех» (Россия). Для фрагментного анализа числа тринуклеотидных повторов использовался праймер CTG-2F с флуоресцентным красителем FAM. Для проведения ПЦР использовался стандартный набор для амплификации ДНК «Gene Pak® PCR MasterMix Core» («IsoGene Lab. Ltd.», Россия). Объем реакции 20 мкл, количество ДНК в реакцию – 30 нг, конечная концентрация праймеров 0,3мкМ. Учёт результатов ПЦР проводили методом горизонтального электрофореза в агарозном геле. В качестве маркера молекулярного веса ДНК использовался «O’Gene Ruler DNA Ladder Mix» («Thermo Fisher Scientific», США).
4.1.3 Секвенирование по Сэнгеру ПЦР-продуктов
Очистка реакционной смеси осуществлялась ферментным методом. Реакцию секвенирования проводили с использованием набора BigDye® Terminator v3.1 Cycle Sequencing Kit («Thermo Fisher Scientific», США) по протоколу производителя. Секвенирование проводили на капиллярных секвенаторах ABI Prism 3730XL («Applied Biosystems», США). Результаты секвенирования анализировали в программе Unipro UGENE.
Для учета результатов ПЦР с праймерами к маркеру тринуклеотидных повторов (CTG) на основании маркера молекулярного веса ДНК в программе «Adobe Photoshop CS5» проводилась отсечка на уровне 350 п.н. Эта длина соответствует ампликону, содержащему 39 повторов CTG. Образцы, в которых была четкая или размытая полоса в диапазоне длин выше уровня отсечки считались несущими хотя бы одну экспансированную аллель CTG18.1. Если в этих образцах присутствовала также полоса в диапазоне длин ниже уровня отсечки, то такие образцы считались моноаллельными по экспансированным повторам CTG18.1. Если полоса в диапазоне длин ниже уровня отсечки отсутствовала, то такие образцы расценивались как биалельные по экспансированным повторам CTG18.1.
4.1.1. Выделение ДНК из образцов крови
ДНК была выделена из размороженных образцов крови (400 мкл) с помощью набора Wizard® Genomic DNA Purification Kit (Promega Corp., США) согласно протоколу производителя.
4.1.2. Полимеразная цепная реакция (ПЦР)
Праймеры к интересующим участкам ДНК были подобраны и проверены на специфичность с помощью программ «Premier Primer» («Premier Biosoft», США) и Primer-BLAST («NCBI», США). Последовательности праймеров приведены в табл. 4. Олигонуклеотиды для проведения ПЦР были синтезированы в НПФ «Литех» (Россия). Для фрагментного анализа числа тринуклеотидных повторов использовался праймер CTG-2F с флуоресцентным красителем FAM. Для проведения ПЦР использовался стандартный набор для амплификации ДНК «Gene Pak® PCR MasterMix Core» («IsoGene Lab. Ltd.», Россия). Объем реакции 20 мкл, количество ДНК в реакцию – 30 нг, конечная концентрация праймеров 0,3мкМ. Учёт результатов ПЦР проводили методом горизонтального электрофореза в агарозном геле. В качестве маркера молекулярного веса ДНК использовался «O’Gene Ruler DNA Ladder Mix» («Thermo Fisher Scientific», США).
4.1.3 Секвенирование по Сэнгеру ПЦР-продуктов
Очистка реакционной смеси осуществлялась ферментным методом. Реакцию секвенирования проводили с использованием набора BigDye® Terminator v3.1 Cycle Sequencing Kit («Thermo Fisher Scientific», США) по протоколу производителя. Секвенирование проводили на капиллярных секвенаторах ABI Prism 3730XL («Applied Biosystems», США). Результаты секвенирования анализировали в программе Unipro UGENE.
Для учета результатов ПЦР с праймерами к маркеру тринуклеотидных повторов (CTG) на основании маркера молекулярного веса ДНК в программе «Adobe Photoshop CS5» проводилась отсечка на уровне 350 п.н. Эта длина соответствует ампликону, содержащему 39 повторов CTG. Образцы, в которых была четкая или размытая полоса в диапазоне длин выше уровня отсечки считались несущими хотя бы одну экспансированную аллель CTG18.1. Если в этих образцах присутствовала также полоса в диапазоне длин ниже уровня отсечки, то такие образцы считались моноаллельными по экспансированным повторам CTG18.1. Если полоса в диапазоне длин ниже уровня отсечки отсутствовала, то такие образцы расценивались как биалельные по экспансированным повторам CTG18.1.
Страница источника: 46-48
OAI-PMH ID: oai:eyepress.ru:article21909
Просмотров: 13964
Каталог
Продукции
Организации
Офтальмологические клиники, производители и поставщики оборудования
Издания
Периодические издания
Партнеры
Проекта Российская Офтальмология Онлайн